Introducere în volumul blocurilor de țesut în microscop biologic
Un microscop biologic cu lumina reflectoarelor poate muta lumina reflectoarelor în sus și în jos pentru a obține o luminozitate moderată, iar deschiderea deschiderii variabile poate fi, de asemenea, modificată pentru a obține o luminozitate moderată. Dacă lumina este de la soare, lumina reflectoarelor poate fi ridicată în mod corespunzător, iar deschiderea luminii variabile poate fi mărită în mod corespunzător. Dacă lumina este prea puternică, lumina reflectoarelor poate fi redusă în mod corespunzător, iar deschiderea intersecției poate fi redusă corespunzător. Dacă tot vă simțiți orbitor în această situație, puteți alege să plasați un filtru adecvat pe suport sub lumina reflectoarelor. Acest stejar poate obține o luminozitate care să te satisfacă. Desigur, reglarea pozițiilor superioare și inferioare ale reflectoarelor poate schimba dimensiunea deschiderii citirii luminii și selecta filtre adecvate, ceea ce necesită o anumită perioadă de practică și experiență.
O problemă foarte importantă în microscopia biologică este procesul de prelevare de celule de eșantionare și izolare. După uscarea de îngheț și încorporarea rășinii (FD), secțiunile ultra-subțire congelate trebuie procesate cu atenție pentru a se asigura că conținutul de 65 de elemente din fiecare parte nu este deteriorat în timpul observației și analizei. Datorită numeroaselor etape și a costurilor ridicate implicate în microanaliza cu raze X, este regretabil să tragem concluzii incorecte dacă celulele analizate sunt deteriorate sau moarte după prelucrarea prelungită și în mai multe etape. Celulele miocardice separate prin tratamentul cu gelatinază au două forme, una este în formă de tijă lungă, iar cealaltă este circulară. Acesta din urmă se referă la celulele care au murit care sunt deteriorate în timpul procesului de separare a celulelor.
Conținutul și distribuția electroliților în aceste două tipuri de celule sunt foarte diferite la un microscop biologic. NA este foarte mare și K este extrem de scăzut în cardiomiocite circulare, iar concentrația de Ca în dendritele liniare este foarte mare. După verificarea cu alte metode analitice, s -a dovedit că Na și K scăzut în celulele circulare și CA ridicat în mitocondrii sunt rezultatul deteriorării membranei în timpul separării celulelor. Metoda de fixare la rece pentru celule și țesuturi implică adesea mai întâi stingerea și apoi stocarea lor în azot lichid. Fixarea de stingere este crucială pentru efectul de conservare. Celulele vii sau țesuturile proaspete sunt bogate în apă, iar atunci când sunt stinse, părțile celulelor sau țesuturilor care intră în contact direct cu agentul frigorific (mai ales atunci când se folosesc azot lichid pentru răcire) sunt adesea înghețate și fixate mai întâi, formând o „coajă” care împiedică partea centrală a celulelor să fie zdrobită și fixată. Prin urmare, atunci când efectuați microanalize cu raze X, se constată adesea că există cristale de gheață în partea centrală a celulelor mai mari. Pentru a preveni această situație să se întâmple, o substanță cu un punct de topire mai mare decât azotul lichid, dar mai mic cu 806C este utilizat ca agent frigorific. Există multe dintre aceste substanțe, dar sunt ușor de obținut, iar cea mai accesibilă este propanul concentrat (punctul de fierbere 42.120c, punctul de topire 187.10c, greutatea moleculară 44,1), care are, de asemenea, o rată de răcire rapidă. Dar dezavantajul său este că este inflamabil.
